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A型组织解离试剂盒
日期:2024-03-18 浏览次数:

A 型组织解离试剂盒

(A-type Tissue Dissociation Kit)

产品⽬录号:TM001

规格:12T/盒

目录

1. 说明

1.1.背景信息

1.2.试剂盒组成

1.3.试剂耗材及仪器

2.试验处理步骤

1.说明

1.1.背景信息

如何在短时间内高效获得高质量的单细胞悬液是诸多后续实验的先决条件。A型组织解离剂(A-type solution)结合SoniConvert®单细胞悬液制备系统可快速获得高纯度、高产量和高活性单细胞悬液。A型组织解离剂中的有效化学试剂成分可对细胞间质打孔,使解离酶接触表面积加大从而达到快速解离组织目的;再配合SoniConvert®单细胞悬液制备系统多向力场的作用原理,快速将细胞从组织上揉取分离。

A型组织解离试剂盒适用于以下组织类型:

哺乳动物脂肪组织

肺泡

表皮

肺泡原位癌

皮肤癌组织

1.2试剂盒组成

A型组织解离试剂盒(A-type Tissue Dissociation Kit)

试剂名称

规格(mL

数量()

组织解离缓冲液

Tissue Wash Buffer,Buffer-1

30

2

A-型组织解离剂

A-Type dissociation buffer,A-Type Solution

2.5

1

解离缓冲液

Uncouple solution,Buffer-2

2.5

1

细胞保护液缓冲液

Cytoprotectant  Solution,Buffer-3

12

1

1.3.所需试剂耗材及仪器

Ø  A型组织解离试剂盒;

Ø  SoniConvert®单细胞悬液制备系统;

Ø  37℃恒温摇床;

Ø  低温水平离心机;

Ø  1.5mL EP 管,50mL离心管;

Ø  40-70μm滤网;

Ø  D-Hanks

Ø  红细胞裂解液;

2.组织单细胞化处理步骤

▲ SoniConvert®单细胞悬液制备系统详细使用步骤请参考仪器操作使用说明书。

▲用于原代细胞培养实验,以下操作步骤均需在无菌条件下进行。

▲加入A型解离剂后,放置于37℃恒温摇床孵育时转速控制在60转以下;

2.1 组织解离器具准备,清洁消毒;

2.2 无菌条件下取出组织;

2.3 将离体组织转移至含预冷的D-Hanks平皿中,采用预冷的D-Hanks清洗组织1-3次(视组织含血量而定),使用无菌眼科剪剔除看得见的血管、结缔组织、纤维成分、凝块等,该操作全程于冰上进行;

2.4 取清洗后的组织50-150mg(根据所需细胞量决定组织用量)转移至1.5mL 无菌的EP管中,加入800μL组织解离缓冲液(Buffer-1),置于冰上;

2.5 使用无菌眼科剪,将组织剪碎成2mm3左右的小组织块;

2.6 加入A型组织解离剂(A-Type Solution)200μL,反复颠倒混匀10s;

2.7 将EP管放到37℃恒温摇床解离软化,期间摇床以60转/分钟震荡,孵育时间5-10min。

2.8 将步骤2.7EP管中上清液取出转移至2.11滤网上过滤,向原EP管加入600μL的Buffer-1;

2.9 针对沉降组织:将解离后的组织采用SoniConvert®单细胞悬液制备系统进行揉取处理,依据组织选择相应处理模式,将探头深入至管底接触组织缓慢上下搅动组织块,持续3-9秒,70%以上组织块解离、或彻底消失,如果组织块用量大于100mg,可重复该步骤1次。

图片1.png

针对漂浮组织(如肺部或脂肪组织由于密度低出现漂浮情况):解离后,将消融探头靠近漂浮组织,并将其温和推入1.5mL EP管底,按住“启动键”不放,同时用消融探头缓慢上下搅动组织块,持续3-9秒,70%以上组织块解离、或彻底消失;如果组织块用量大于100g,可重复该步骤1次。

图片2.png

2.10(可选)依据处理组织后的粘稠情况,视情况加入200μL 解离缓冲液(Buffer-2),混匀处理5min;

2.11 将解离后的单细胞悬液采用滤网(依据细胞大小选择40-70μm滤网)过滤至无菌50mL离心管中;

2.12 加入5mL预冷的D-Hanks溶液冲洗滤网至步骤2.11中的50mL离心管中,4℃ 500g离心5min,去除上清;

2.13(可选)根据实验是否需要去除红细胞,将红细胞裂解液加入细胞沉淀中混匀处理5min;

2.14 4℃ 500g离心5min,弃上清;

2.15 加入500-1000μL细胞保护液(Buffer-3)重悬;

2.16 用细胞计数板或全自动细胞计数器对细胞计数,根据需求用细胞保护缓冲液(Buffer-3)或PBS(PH:7.4)调整细胞浓度至1×105至1×107个/mL。